elisa都需要包被么
ELISA包被蛋白质的原理？
ELISA包被蛋白质的原理？
包衣板上的成分具有很强的阴离子吸附功能，包衣液的PH值为9.6，可以使被包衣蛋白呈碱性，因此可以牢固地吸附在包衣孔中。
请教ELISA中样品稀释液为什么要加入Tween20，原理是什么？
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棋盘滴定法原理？
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ELISA的基本过程是？
1.包衣过程(注意设置空白对照和阴性对照):。
将用过的抗原用包被稀释液稀释至适当浓度(一般要求抗原包被量为每孔20-200μg)，每孔加入100μl抗原，将孔内液体在37℃放置4h或4℃放置24h。(为避免蒸发，应盖上平板或将其平放在金属湿盒中，底部铺上湿纱布。)
2.关闭酶标反应孔:。
5%小牛血清在37℃密封40分钟。在密封期间，所有反应孔都填充有密封液，并且每个孔中的气泡都被去除。密封后，用洗涤液洗涤孔3分钟。
洗涤方法::吸干孔中的反应液，用洗涤液充满板孔，静置2min，轻轻摇动，吸干孔中的液体，倒出液体，拭于吸水纸上。洗涤3次
3.加入待测样品(建立合适的浓度梯度):。
一般用1 : 50-1 : 400的稀释液进行检测，要用大的稀释体积，一般保证gt20μl l的样品吸收.
将稀释后的样品加入酶标反应孔中，每个样品至少加入两个孔，每个孔100μl，在37℃放置40-60min。用洗涤液冲洗3次，每次3分钟。
4.加入酶标抗体:。
酶标抗体:按酶标物供应商提供的参考稀释度进行，37℃，30-60分钟。当短于30分钟时，结果往往不稳定。向每个孔中加入100μl。像以前一样洗。
5.加入底物溶液(现在用):)
TMB-尿素过氧化氢溶液是首选，其次是OPD-过氧化氢底物溶液系统。
底物加入量为:每孔100μl，将底物置于37℃暗处3-5分钟，加入终止液显色。
6.停止反应，:
向每个孔中加入50μl终止液以终止反应，并在20分钟内测量。实验结果